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动物炭疽诊断技术(NY/T 561—2002) |
2007-11-21 09:13:56 |
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动物炭疽诊断技术(NY/T 561—2002) |
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| 文号：NY/T 561—2002 |
1 范围
本标准规定了动物炭疽杆菌分离培养鉴定及血清学试验方法。
本标准适用于各种动物炭疽病的诊断及检疫。
2 新鲜疑似炭疽病料标本的细菌学检查
2.1 显微镜检查
2.1.1 材料准备
2.1.1.1 器材
恒温箱、显微镜、高压灭菌器、煮沸消毒器、漏斗、15mm×l50mm试管、最小反应管、移液管、带胶乳头的毛细吸管(或血清加样器)、乳钵、中性行棉、5mL注射器、外科刀、镊、铂金耳、酒精灯等。
2.1.1.2 培养基
戊烷脒多粘菌素血液琼脂平板、碳酸氢钠琼脂平板、快速增殖肉汤、普通营养肉汤、普通营养琼脂平板、2％绵羊血液琼脂乎板、2％兔血清琼脂平板等，配制方法见附录A。
2.1.1.3 试剂
炭疽沉淀素血清、阴性血清、标准炭疽杆菌抗原、炭疽荧光抗体、炭疽噬菌体。
2.1.1.4 溶液及染色液
克氏固定液、磷酸盐缓冲盐水(PBS)、缓冲甘油、0.5％苯酚(俗名石炭酸)溶液、福尔马林龙胆紫染色液、碱性美蓝染色液、革兰氏染色液，配方见附录B。
2.1.1.5 实验动物
体重17g—20g清洁级昆明系小鼠。
2.1.2 病料标本采集
疑为炭疽动物，除慢性者外，其他不论是最急性者或急性者均予生前将耳部消毒后取血液，病变部取水肿液或渗出液等直接涂于载玻片上，自然干燥后，将玻片涂面相对叠好，中间用火柴杯隔开，以线捆扎，外用塑料纸包好。或用灭菌脱脂棉、滤纸、布片吸取血液等放于小试管中，待检。
死后，自消毒的耳根部或四肢末端部采取血液滴于玻片上；或用细绳在耳根部紧扎两道，在两绳之间将耳割下，以5％苯酚溶液(见第B.8章)浸湿的棉布包好，放广口瓶中待检，耳切口处用烧红的烙铁烧灼止血。已经错剖的疑似炭疽动物尸体，可取肝、脾、肾等脏器置于试管中，待检。
上述涂片自然干燥，火焰固定，如徐片较薄，也可用无水甲醇或乙醇固定，然后用下述染色法染色镜检。
2.1.3 雷比格尔(Rabiger)氏荚膜染色法
2.1.3.1 操作方法
滴加0.5mL一1.0mL福尔马林龙胆紫染色液(见第B.5章)于涂抹面上，染色2s一5s，水洗(冲洗水用次氯酸盐溶液消毒，余同)、干燥、镜检。
2.1.3.2 结果观察
粗大菌体果竹节排列，染成深紫色，菌体周围的荚膜染成淡紫色。
2.1.4 碱性美蓝染色法
2.1.4.1 操作方法
滴加0.5mL一1.0mL碱性美蓝染色液(见第B.6章)于涂抹面上，染色2min一3min，水洗、干燥、镜检。
2.1.4.2 结果观察
粗大菌体呈竹节状排列，染成深蓝色，菌体周围的荚膜染成粉红色。也可用3％沙黄色液染色3min— 5min，菌体染成红色，菌体周围荚膜染成黄色。
如观察到以上形态特征的杆菌，可初步确定为炭疽杆菌。
2.1.5 荧光抗体染色法
2.1.5.1 取样，涂片
以无菌手续采取可疑病变组织、水肿液、血液或渗出液等材料制成涂片标本，待检。
2.1.5.2 染色方法
染色方法如下：
a)将制备好的涂抹玻片，自然干燥。
b)将玻片投入克氏固定液内、固定15min，再经95％酒精略加漂洗，自然干燥。
c)滴加炭疽荧光抗体血清(见2.1.1.3)0.5mL?D1.0mL浸没涂片，放湿盒内，室温孵育20min—30min。
d)用磷酸盐缓冲盐水(PBS)(见第B.2章)冲去荧光抗体，并于同一磷酸盐缓冲盐水内浸泡3min—5min，再经蒸馏水略加漂洗，自然干燥。
e)加适量缓冲甘油(见第B.3章)，封片，荧光显微镜检查。
2.1.5.3 检查结果
++++：菌体周围的荚膜肥厚，发闪亮的黄绿色荧光，中央菌体呈明显成不明显的橙红色。
+++：菌体周围的英膜肥厚，发明亮的黄绿色荧光，中央菌体呈明显成不明显的橙红色。
++：菌体周围的荚膜肥厚，发较弱的黄绿色荧光。中央菌体呈明显或不明显的橙红色。
+：荚膜不显著，黄绿色荧光暗淡，中央菌体呈明显或不明显的橙红色。
—：无黄绿色荧光。
荧光反应在“++”号以上者，报告发现了炭疽杆菌。
2.2 分离培养检查
炭疽杆菌的培养性状具有特征性，是确诊的重要依据之一，但病畜病程短，故分离培养检查主要用于动物死后新鲜标本的检验。
2.2.1 操作方法
用铂金耳钓取血液、水肿液、渗出物等，直接涂于平板培养基表面；脏器标本应切成几个不同的断面，压印于平板表面上，置37℃恒温箱中孵育18h—24h。
2.2.2 培养结果
如观察到以下特征的菌落，符合炭疽杆菌的特征。
a)普通营养琼脂平板(见第A.5章)形成扁平、灰白色、毛玻璃样、粗糙、表面干燥、边缘不整齐、直径约3mm?D5mm的火焰状大菌落。用低倍显微镜观察菌落边缘，呈卷发状。培养物有粘性，用铂金耳钓取，可拉成长丝，称为“拉丝状”现象。
b)2％绵羊血液琼脂平板(见第A．1章)菌落周围不溶血，超过24h，发生轻度不完全溶血。
c)戊烷脒多粘菌素血液琼脂平板(见第A．1章)其他需氧芽胞杆菌不生长，但炭疽杆菌生长，仅受轻度抑制，且菌落生长缓慢，于15h一24h，形成较小的毛玻璃样粗糙的菌落，其边缘仍保持卷发状，不溶血。
2.3 分离的可疑菌株鉴定
用铂金耳钓取可疑菌落接种于普通营养肉汤中(见第A.4章)增菌，在37℃水浴箱中孵育4h?D5h，再钓菌进行下述形态特征、培养特性及抗原性鉴定。
2.3.1 形态特征
2.3.1.1 革兰氏染色(见第B.7章)镜检。
2.3.1.2 检查结果：见到粗大菌体，长3um?D5um，宽0.8um一1.2um，中央椭圆形芽胞，长链条排列，两菌接触端如刀切状，革兰氏阳性。可判为炭疽杆菌。
2.3.2 培养特性
2.3.2.1 普通营养肉汤
管底有白色棉絮状沉淀物，培养液澄清，轻摇试管，沉淀物卷绕成团，往上升起，但不散失。
2.3.2.2 青霉素串珠试验和青霉素抑制试验
用铂金耳钓取待鉴定的培养物于2％兔血清琼脂平板(见第A.7章)上，以灭菌的L形曲玻璃棒将菌液在平板表面上涂匀，用小镊子夹取浸有每毫升含50IU一100IU青霉素直径6mm小纸片，贴于平板培养基中央，置37℃恒温箱中孵育3h?D4h，取出，打开平皿盖，平放在显微镜载物台上，用低倍及高倍显微镜观察。
由于青霉素向外扩散，炭疽杆菌出现的反应分三层：内层——青霉素浓度较高，炭疽杆菌的生长受抑制，不生长，其他需氧芽胞杆菌仍能生长；中层——青霉素浓度适宜，呈链条状排列的炭疽杆菌菌体膨胀，形成串珠状，其他需氧芽胞杆菌不形成串珠状；外层—?D青霉素浓度太低，炭疽秆菌生长，仍呈链条状。观察完毕，继续孵育8h一12h，测量纸片周围抑菌圈的大小，炭疽杆菌一般为20mm左右，其他需氧芽胞杆菌无抑菌圈。
2.3.2.3 荚膜形成试验
用铂金耳钓取待检培养物接种于碳酸氢钠琼脂平板(见第A.2章)上，置20％二氧化碳条件下(如烛缸中)，于37℃恒温箱中孵育5h?D24h。强毒炭疽杆菌能产生大量的谷氨酸物质，在菌体周围生出荧膜，菌落至M(黏液)型。
2.3.2.4 噬菌体裂解试验
用铂金耳钓取普通营养肉汤培养物或制备的标本乳剂涂于普通营养琼脂平板上，使涂抹面成圆形，干燥后，用铂金耳钓取炭疽噬菌体(见2.1.1.3)一满环，点种于圆形培养物的中央，置37℃恒温箱中孵育3h?D5h。
在培养物中央出现明显而清亮的噬菌斑者，为裂解阳性反应，如在培养物中不出现或只出现不明显的斑点者，为阴性反应。为防止判定错误，可将培养时间延长到18h，再观察一次即可确定。其他需氧芽胞杆菌不出现特异的噬菌斑。
2.3.3 抗原性鉴定(沉淀试验)
2.3.3.1 沉淀原制备
取装有待鉴定的普通营养肉汤培养物的试管，置水浴锅中煮沸15min一30min，取出冷却后，用中性石棉滤过，获得的透明液即为待检沉淀原。
2.3.3.2 本试验的操作方法
用毛细吸管吸取炭疽沉淀素血清(见2.1.1.3)0.1mL，徐徐注入斜置的最小反应管内，达到管的三分之一处，然后用另一支毛细吸管吸取待检的沉淀原沿反应管壁慢慢加到沉淀素血清的上面，达到管的三分之二高处，随即将斜置的反应管立起，置室温下待判定。
2.3.3.3 对照试验
实施本试验前，应做炭疽沉淀素血清对标准炭疽茵粉抗原和0.5％苯酚生理盐水，及阴性血清对标准炭疽菌粉抗原等项对照试验，具体参照5.4.2。
2.3.3.4 结果判定
阳性反应者在lmin?D5min内于两液面的交界处出现清晰、致密如线的白色沉淀环。
其他判定标准与5.5中的b)、c) 和d) 相同。
2.4 小鼠接种试验
将病料标本用生理盐水做成1：5乳剂给3只小鼠(见3.1.1.5)各皮下注射0.05mL一0.1mL。小鼠通常在注射后的24h?D26h因败血症死亡。然后按2.1和2.2要求做检查。
2.5 细菌学检查的综合报告
病料染色标本镜下观察到呈竹节状有荚膜的单在短链条排列的大杆菌；培养物染色标本镜下观察到长链条排列的，有中央芽胞的大杆菌，革兰氏阳性，可初步报告为炭疽杆菌。培养物在普通营养肉汤中呈棉絮状生长，上液透明；平板上形成火焰状大菌落；不溶血；串珠试验及噬菌体裂解试验阳性。可报告检出炭疽杆菌。根据特殊需要所做的青霉素抑制试验，如果炭疽杆菌被青霉素抑制不生长时，可报告为青霉素敏感株。在二氧化碳(CO2)条件下培养，形成黏液型菌落，涂片染色镜检，观察到有肥厚荚膜的粗大杆菌(可用以代替小鼠接种试验)，可报告检出了炭疽杆菌强毒株。
3 腐败、陈旧脏器、尸体炭疽杆菌的检查
腐败、陈旧脏器及尸体标本的检查按2.3.3项沉淀试验实施检查和判定结果。
4 鬃、毛、绒类中炭疽杆菌的检查
4.1 取样
用灭菌棉拭子蘸灭菌生理盐水涂擦采取样品时，应从里到外、从上到下、从左到右，尽量涂擦采取完全。然后置灭菌试管中待检。
4.2 分离培养
4.2.1 每支棉拭子各涂一个戊烷脒多粘菌素血液琼脂平板和一个碳酸氢钠琼脂平板。
将戊烷脒多粘菌素血液琼脂平板放于普通温箱内；碳酸氢钠琼脂平板放于含20％二氧化碳培养箱内(如烛缸)。二者均于37℃培养18h?D24h。
4.2.2 如于戊烷脒多粘菌素血液琼脂平板上发现可疑菌落时，挑取培养物接种一支快速增殖肉汤管，于37℃水浴培养3h?D4h，做革兰氏染色检查，或按2.1.5作荧光抗体染色检查。
4.2.3 如于碳酸氢钠琼脂平板上发现可疑的黏液性菌落时，挑取培养物按2.1.3或2.1.4方法作
法作荚膜染色检查。
4.2.4 结果判定：按2.1.3—2.1.5和2.3.1规定判定结果。
5 皮张标本炭疽的沉淀试验检查
5.1 取样
5.1.1 在每张皮的腿部或腋下边缘部位，剪取样皮一块约1.0g。复检时，仍在第一次取样的附近部位采取样皮一块约2g，供作检验材料。
5.1.2 样皮应装入特制的布袋内(也可用其他容器)，每袋应制成100小格，并编成1—100个袋号(称百格袋)，按其取样顺序，将样皮依次装入小格袋内，皮张号、样皮号与袋格号应一致，逐将样皮袋严密包装送往消毒室，并附以送检单，格式见表1。
表1 炭疽沉淀试验样次送检单 报检号
送检单位： 地址：
样皮名称： 数量：
来源地： 存放地：
采样日期： 受理日期：
起止号码：
报检机关兽医： 签印： 年 月 日
5.1.3 皮垛的编号，应与装样皮的布袋号相一致。盐皮、鲜皮及冻皮，应分别取样，不得混掺。
5.1.4 取样完毕的皮张，在未收到检疫结果通知单前，应保持原状，不得重新分类、包装、加工和移动。
5.1.5 取样人员，应进行炭疽预防注射和具有一定的防疫知识。在工作前，应穿好防护服，工作后，应充分消毒洗手，工作服须进行103.41kPa高压蒸汽灭菌，要严格遵守防疫卫生制度。
5.1.6 每次取样时，兽医检疫人员，应在现场负责指导监督。
5.2 消毒
5.2.1 收到样皮后，应按送检单内容进行登记。
5.2.2 检查无误后，将样皮袋放入高压蒸汽灭菌器内，使压力升到103.41kPa，保持30min。
5.2.3 干皮与湿皮应分别消毒，如一次灭菌，干皮放上边，湿皮放下边，但湿皮、鲜皮和冻皮，于灭菌前应在37℃一38℃恒温箱中放置48h，或放室温3d一4d，令其干燥后，再进行消毒灭菌。
5.2.4 在操作中，应按检验炭疽病的防疫要求，不得污染周围环境和物品，用后的器械物品应及时消毒处理。
5.3 被检皮张抗原的制备
5.3.1 将清洁干燥的容瓶，放在木盘中，排成五列(或10列)，每列10只，每盘50瓶(或100瓶)，经灭菌后，修剪除去脂肪的样皮，按规定的质量，每两张装入1个容瓶中，自左起第一排第1瓶放1—2号，第10瓶放19—20号，其余类推，第五排第50瓶放99?D100号皮样，容瓶位置，不得混乱，第1瓶和第50瓶应作记号。
5.3.2 如有缺皮或样皮混乱时，须将相应的容瓶翻扣起来，以免错号。
5.3.3 装样皮的木盘编号与样皮袋号应一致，同时将编号卡片放在木盘外侧的号夹中不得遗失。
5.3.4 按1：10的比例将浸皮液(0.5％苯酚生理盐水)逐瓶加入20mL，在10℃—20℃室温的条件下，浸泡16h?D25h，也可在8℃—14℃水浴中浸泡14h~20h。
5.3.5 取清洁无污的容瓶与漏斗(每漏斗放人叠好的中性滤纸)，每10个为一排排好，每盘五排计50个，其各个编号应与样皮木盘各个编号相对应。然后对号滤过，应使皮张抗原滤到澄清透明为止。
5.3.6 将滤过透明之皮张抗原木盘编号卡片，放在木盘外侧的号夹中，不得丢失。
5.4 炭疽沉淀试验操作方法
5.4.1 本试验须在15℃—20℃以上的室温下进行。
5.4.2 实施本试验前须按下列要求，做对照试验：
a)炭疽沉淀素血清对1：5 000信标准炭疽菌粉抗原，在lmin内应呈标准阳性反应。对已知阳性皮张抗原经15min应呈阳性反应。
b)炭疽沉淀素血清，对已知阴性皮张抗原和0.5％苯酚生理盐水作用15min，应呈阴性反应。
c)阴性血清对1：5 000倍标准炭疽菌粉抗原和已知阳性皮张抗原经15min，应呈阴性反应。
5.4.3 本试验(初检)将反应管接皮张抗原木盘内的编号顺序排好，用血清加样器(或带胶乳头的毛细吸管)向反应管内加注炭疽沉淀素血清0.1mL一0.2mL。然后用抗原加注器，吸取等量的皮张抗原，沿反应管壁徐徐加入，并记录加完后的时间，按加完的时间顺序排好，待判。
5.4.4 血清与皮张抗原的接触面，界限清晰，明显可见，界限不清者应重做。血清和抗原加注器(或带胶乳头的毛细吸管)应以0.5％苯酚生理盐水充分彻底洗涤后，方可继续使用。
5.4.5 如为盐皮抗原，应在炭疽沉淀素血清中加入4％化学纯氯化钠后，方能做血清反应。
5.5 检查结果
判定时，左手取出木盘中的装有10只反应管的木条，然后将反应管置于水槽中蘸水取出，放于眼睛平行位置，右手持黑色板衬于反应管的后面，在光线充足处进行观察与判定。须按下列标准记录结果：
a)“+”：抗原与血清接触后，经15min在两液接触面处，出现致密、清晰明显的白环为阳性反应。
b)“±”：白环模糊，不明显者为疑似反应。
c)“—”：两液接触面清晰，无白环者为阴性反应。
d)“O”：两液接触面界限不清，或其他原因不能判定者为无结果。
对可疑和无结果者，须重做一次。
5.6 复检
5.6.1 病皮复检时，应单张检验。初检呈阳性和疑似的材料，须重新时间一浸泡瓶的两个皮张号取样复检。复检时，应使用2～3个血清效价与初检血清效价相近的不同批号的沉淀素血清末进行，同时用阴性血清做对照。复检的方法同初检。
5.6.2 复检材料呈阳性反应时，则判为炭疽沉淀试验阳性。复检再呈疑似反应时，须按阳性处理。
5.6.3 经确定某号为阳性病皮后，应将病皮及上下相邻之污染皮，准确的挑出，均作病皮处理，并盖病皮戳印，保管于专用库或指定地方隔离。病皮、污染皮未经消毒，不得作合格皮处理。
5.6.4 皮张检疫结束后，应将结果填人检疫簿中，并开检验结果通知单，格式见表2。
表2 检验结果通知单 第 号
反应类别 张数 号码
阳 性
疑 似
阴 性 备
注
合 计
检疫机关： 兽医检验员：
5.6.5 以有效方法对病皮进行消毒后，并经效果鉴定合格者，方能投人生产加工应用。 |
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作者: |
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